mangrowce czerwone

II. HABITAT I DYSTRYBUCJA
Regionalne występowanie:
Rhizophora mangle występuje na całym świecie w przybrzeżnych i estuariowych obszarach tropików i subtropików do około 28° zarówno na półkuli północnej jak i południowej.

IRL Distribution:
W Indian River Lagoon, czerwone lasy namorzynowe są powszechnym elementem krajobrazu do około 28° na północ, w okolicach Merritt Island. Na północ od tej lokalizacji znajduje się strefa przejściowa, w której lasy namorzynowe stopniowo ustępują miejsca bagnom słodowym. Stres związany z mrozem na północ od strefy przejściowej zapobiega osiedlaniu się czerwonych namorzynów.

III. HISTORIA ŻYCIA I BIOLOGIA POPULACJI

Wiek, wielkość, długość życia:
Niewiele wiadomo na temat typowego wieku dojrzewania namorzynów w południowej Florydzie, choć wysunięto hipotezę, że wiek dojrzewania namorzynów na Florydzie jest w jakiś sposób powiązany z okresowością huraganów.

Czerwone lasy namorzynowe są generalnie dominującym gatunkiem namorzyn na linii wody lub bezpośrednio przy niej, choć często mogą występować z czarnymi i białymi lasami namorzynowymi.

Rozprzestrzenianie:
Kwiaty czerwonych mangrowców odrywają się od drzewa macierzystego po dojrzeniu i mogą pływać w słonej wodzie przez około rok bez ukorzeniania.

Reprodukcja:
Uważa się, że kwiaty Rhizophora mangle są samopylne lub wiatropylne. Po zapłodnieniu, rozmnóżki namorzynowe przechodzą ciągły rozwój od kwiatu do kiełkującej sadzonki, gdy są jeszcze przytwierdzone do rośliny macierzystej, bez fazy spoczynku lub fazy nasiennej, wykazując w ten sposób żyworodność. Te sadzonki, lub propagule, ostatecznie odpadają od rośliny macierzystej i są w stanie, w przypadku braku odpowiedniego podłoża, unosić się przez dłuższy czas (ponad rok) w słonej wodzie bez ukorzeniania się.

IV. TOLERANCJE FIZYCZNE

Temperatura:
Zasięg geograficzny R. mangle generalnie pokrywa się z izotermą 20 °C zarówno na półkuli północnej jak i południowej, i jest podobny do zasięgu raf koralowych. Stres związany z mrozem powyżej 28° szerokości geograficznej północnej i południowej nie pozwala czerwonym drzewom namorzynowym dobrze się zadomowić. Jednakże, gdy poddane stresowi zimna, populacje czerwonych lasów namorzynowych wykazują różnice w przeżywalności i ilości szkód wyrządzonych na roślinę w oparciu o ich geograficzne punkty pochodzenia.

Zasolenie:
Jako fakultatywne halofity, lasy namorzynowe mają zdolność do rozwoju w podmokłych glebach, które mogą mieć zasolenie w zakresie od 0 – 90 ppt.Namorzyny wykazują kilka różnych typów mechanizmów do radzenia sobie z wysoce zasolonymi warunkami. Rhizophora mangle wyklucza sól zawartą w wodzie morskiej na styku korzeń-podłoże. Czarna namorzyna (Avicennia germinans) i biała namorzyna (Laguncularia racemosa) są w stanie pobierać wodę morską przez korzenie, ale wydalają nadmiar soli przez pory lub gruczoły solne znajdujące się na powierzchni liści.

Inne fizyczne tolerancje:
Mangrowce mogą doświadczyć warunków redukcyjnych do co najmniej -200 mV. Jedną z najbardziej widocznych adaptacji do anoksji są adaptacje korzeni. R. mangleutilizes prop korzeni, które rosną w dół od łodygi rośliny, a nie opiera się na korzenie rosnące w górę od podłoża. Lenticels, lub pory, w korzeniach powietrznych są przypuszczalnie droga, przez którą tlen jest dostarczany do podziemnego systemu korzeniowego. Drobne korzenie boczne są w stanie gromadzić się w podłożu i wytwarzają większość torfu, na którym zbudowane są bagna namorzynowe.

Adaptacje do skrajnych wartości pH nie zostały zbadane u namorzynów czerwonych, jednakże odnotowano wartości pH pomiędzy 5,3 a 7,8.

V. Tryb troficzny:

Lasy namorzynowe zwykle wykazują szeroki zakres produktywności, w zależności od czynników takich jak reżimy hydrologiczne, dostarczanie składników odżywczych itp. i są uważane za istotne źródła materii organicznej dla systemów estuariowych.

Konkurenci:
Ball (1980) zasugerował, że konkurencja między trzema gatunkami namorzynów może być częściowo odpowiedzialna za strefowanie obserwowane w wielu obszarach namorzynów. Bezpośrednimi konsumentami namorzynów na Florydzie są: krab namorzynowy plamisty (Goniosiscruentata), krab namorzynowy lądowy (Ucides cordatus), ślimak kawowy (Malampus coffeus) i ślimak drabiniasty (Cerithideascalariformis). Konsumentami liści namorzynów są: krab namorzynowy (Aratuspisonii), krab namorzynowy plamisty (G. cruentata), krab niebieski (Cardisoma guanhumi) i różne rodzaje owadów. Wood boringisopods feed upon and damage prop roots.

Habitat:
Red mangrove propagules may float for upwards of a year without taking root.They generally take root upon coming to rest on a suitable substrate areaconsisting of sand, silt, mud or clay which offers some protection from waves.Korzonki mogą się ukorzenić nawet przy całkowitym zanurzeniu, a dojrzałe drzewa, w zależności od typu, nie są wrażliwe na hydrookres; mogą pozostać zanurzone od kilku godzin do prawie całkowitego zanurzenia bez widocznych efektów ubocznych.

Gatunki towarzyszące:
Mangrowce tworzą lasy międzypływowe, w których korzenie rekwizytowe namorzynów czerwonych, pneumatofory namorzynów czarnych i związane z nimi ławice torfu służą jako dominujące podłoże międzypływowe dla innych członków społeczności namorzynów. Namorzyny czarne (Avicennia germinans) i namorzyny białe (Lagunculariaracemosa) występują zwykle w połączeniu z namorzynami czerwonymi. Występuje jednak segregacja tych trzech gatunków, przy czym namorzyny czerwone zajmują zwykle najniższe pozycje międzypływowe. Mangrowce czarne i białe występują na nieco wyższych wysokościach pływów.

VI. STATUS SPECJALNY

Status szczególny:
Struktura siedliska

Korzyści w IRL:
Ekosystemy lasów namorzynowych są niezbędne jako źródła energii i siedliska zastępcze dla młodych ryb i bezkręgowców. Stanowią one również siedlisko grzędowe i lęgowe dla ptaków brodzących. Dodatkowo, są one źródłem produkcji drewna i są ważne jako bufory zmniejszające wpływ sztormów wzdłuż wybrzeża.

Ważność ekonomiczna:
Ze względu na ich istotną rolę w dostarczaniu siedlisk narybkowych dla młodych ryb, z których wiele ma znaczenie handlowe lub rekreacyjne, lasy namorzynowe przyczyniają się do ciągłego sukcesu turystyki i rybołówstwa na Florydzie.

VII. BIBLIOGRAFIA

Ball, M.C. 1980. Patterns of Secondary Succession in aMangrove Forest of
Southern Florida. Oecologia 44:226-235.

Carlton, J. 1974. An Ecological Survey of SelectedMangrove Communities in
Florida. Master of Arts Thesis. Department ofBiology in the University of
South Florida.

Ellison, A., and E. Farnsworth. 1996. Spatial andTemporal Variability in Growth
of Rhizophora mangle Saplings on CoralCays: Links with Variation in
Insolation, Herbivory, and Local SedimentationRate. Journal of Ecology
84:717-731.

Ewa-Oboho, I.O., and N.J. Abby-Kalio. 1993. SeasonalVariation and
Community Structure of Epibenthic Algae on theRoots of the Mangrove
Rhizophora mangle at a Shallow TropicalEstuary. Tropical Ecology
34(2):160-172.

Feller, I.C. 1995. Effects of Nutrient Enrichment onGrowth and Herbivory of
Dwarf Red Mangrove (Rhizophora mangle).Ecological Monographs
65(4):477-505.

Gonzalez, C.D., E. Rivas, et al. 1995. Factores QueAfectan La Adaptacion
Postsiembra De Plantulas De Rhizophora mangleL. 1773 En Las Islas Del
Rosario, Caribe Colombiano. Boletin Ecotropica28:16-32.

Lin, G., and L.L. Sternberg. 1992. Comparative Study ofWater Uptake and
Photosynthetic Gas Exchange Between Scrub andFringe Red Mangroves,
Rhizophora mangle L. Oecologia 90:399-403.

Lin, G., and L. Sternberg. 1993. Effects of SalinityFluctuation on Photosynthetic
Gas Exchange and Plant Growth of the Red Mangrove(Rhizophora mangle
L.). Journal of Experimental Botany44(258):9-16.

Lin, G., and L. Sternberg. 1995. Variation in PropaguleMass and its Effect on
Carbon Assimilation and Seedling Growth of RedMangrove (Rhizophora
mangle) in Florida, USA. Journal of TropicalEcology 11:109-119.

McKee, K.L. 1995. Seedling Recruitment Patterns in aBelizean Mangrove
Forest: Effects of Establishment Ability andPhysico-Chemical Factors.
Oecologia 101:448-460.

McMillan, C., and C.L. Sherrod. 1986. The ChillingTolerance of Black
Mangrove, Avicennia Germinans, From theGulf of Mexico Coast of Texas,
Louisiana and Florida. Contributions in MarineScience 29:9-16.

Mullin, S.J. 1995. Estuarine Fish Populations Among RedMangrove Prop Roots
of Small Overwash Islands. Wetlands15(4):324-329.

Pulver, T.R. 1976. Transplant Techniques for SaplingMangrove Trees,
Rhizophora mangle, Laguncularia racemosa andAvicennia germinans,
in Florida. Florida Department of NaturalResources, Marine Research
Laboratory, Number 22, 14 Pages.

Rey, J.R. 1994. Effects of Neighbors on Growth andMortality of Mangrove
Seedlings in Florida, U.S.A. Wetlands14(4):308-315.

Ribi, G. 1981. Does the Wood Boring Isopod Sphaeromaterebrans Benefit
Red Mangroves (Rhizophora mangle)? Bulletin of Marine Science
31(4):925-928.

Ribi, G. 1982. Differential Colonization of Roots of Rhizophoramangle by the
Wood Boring Isopod Sphaeroma terebrans as aMechanism to Increase
Root Density. Marine Ecology 3(1):13-19.

Stephens, W.M. 1962. Tree that Makes Land. SeaFrontiers 8(4):219-230.

Rivadeneyra, R.I. 1989. Ecology of the Epibiosis on theSubmerged Roots of
Rhizophora mangle in Bahia De LaAscension, Quintana Roo, Mexico.
Ciencias Marinas 15(1):1-20.

Savage, T. 1972. Florida Mangroves: A Review. FloridaDepartment of Natural
Resources, Marine Research Laboratory, St.Petersburg, Florida. Leaflet
Series: Volume VII – Marine Plants. Part 2(Vascular Plants) No.1, 15
Pages.

Schmalzer, P.A. 1995. Biodiversity of Saline andBrackish Marshes of the Indian
River Lagoon: Historic and Current Patterns.Bulletin of Marine Science
57(1):37-48.

Smith, S.M., and S.C. Snedaker. 1995b. DevelopmentalResponses of
Established Red Mangrove, Rhizophora mangle L.Seedlings to Relative
Levels of Photosynthetically Active andUltraviolet Radiation. Florida Scientist
58:55-60.

Vaughan, T.W. 1910. The Geologic Work of Mangroves inSouthern Florida.

Smithsonian Miscellaneous Collections 52(UML14,101):461-464.

Vaughan, T.W. 1910.