CHAPTER 1
On 28 grudnia, 2021 by admineISBN: 978-1-78801-621-6
EtsuoNiki*a and KouichiAbeb
a University of Tokyo, Research Center for Advanced Science and Technology (RCAST), Komaba, Tokyo 153-8904, Japan. E-mail: [email protected]
b SSCI Laboratories, Faculty of Pharmacology, Musashino University, Nishi-Tokyo-Shi, Tokyo 202-0023, Japan.
Witamina E to zbiorcza nazwa lipofilnych, naturalnie występujących związków, których struktura molekularna składa się z pierścienia chromanolu z łańcuchem bocznym zlokalizowanym w pozycji C2 i obejmuje cztery tokoferole i cztery tokotrienole. Witamina E, odkryta jako czynnik żywieniowy niezbędny do prawidłowej reprodukcji, jest obecnie uznawana za główny antyoksydant zmiatający wolne rodniki u ludzi i chroniący cząsteczki biologiczne przed szkodliwymi modyfikacjami oksydacyjnymi. Podsumowano struktury i właściwości homologów witaminy E oraz ich źródła, funkcje i zastosowania.
1.1 Wprowadzenie
W 1922 roku Evans i Bishop wykazali istnienie dotychczas nierozpoznanego czynnika żywieniowego niezbędnego do normalnej reprodukcji u szczura.1. Przyjęto w tym czasie, że najbardziej uderzające funkcji witaminy E było zapewnienie normalnej ciąży w ciąży szczura, aby zapobiec resorpcji zarodków, które niezmiennie występuje w jego braku.2 Ten nieznany czynnik diety X stwierdzono, że jest obecny w zielonej sałacie, suszone liście lucerny, pszenicy i owsa. Evans wyizolował czynnik X z oleju z kiełków pszenicy, podał wzór chemiczny C29H50O2 i zaproponował nazwę α-tokoferol w 1936.3 Wzór strukturalny dla α-tokoferolu został dostarczony przez Fernholz w 1938.4 Tocotrienols zostały odkryte znacznie później niż tokoferol i nazwane na początku 1960s.5,6
Olcott stwierdził, że frakcje lipidowe olejów roślinnych zawierały przeciwutleniacze przeciwko utleniającej degradacji smalcu.7. Od tego czasu jednoznacznie wykazano, że witamina E działa jako istotny przeciwutleniacz in vivo oraz in vitro i odgrywa ważną rolę w zapobieganiu szkodliwym uszkodzeniom oksydacyjnym cząsteczek biologicznych.8-11 Ostatnio wiele uwagi poświęcono również nieutleniającym funkcjom witaminy E, w tym sygnalizacji komórkowej, regulacji genów, procesom błonowym i funkcjom nerwowym.12-14 Jednak wiele kwestii pozostaje nadal kontrowersyjnych i nie zostało wyjaśnionych. Rzetelne informacje oparte na solidnych dowodach chemicznych są niezbędne do zrozumienia roli witaminy E in vivo, jak również in vitro.
1.2 Homologi: Nomenklatura i Struktura
Witamina E jest substancją pochodzenia roślinnego, rozpuszczalną w lipidach, której struktura molekularna składa się z pierścienia chromanolu z łańcuchem bocznym umieszczonym w pozycji C2. Witamina E odnosi się do grupy ośmiu różnych związków: α-, β-, γ-, i δ-tokoferoli i odpowiadających im czterech tokotrienoli. Cztery tokoferole mają nasycony fitylowy łańcuch boczny, podczas gdy tokotrienole mają nienasycony izoprenylowy łańcuch boczny zawierający trzy wiązania podwójne przy C3′, C7′ i C11′. Wiązania podwójne w łańcuchach bocznych tokotrienoli w C3′ i C7′ mają konfigurację trans. Formy α-, β-, γ- i δ- różnią się w odniesieniu do liczby i pozycji grup metylowych na pierścieniu chromanolu. Formy α tokoferolu i tokotrienolu mają trzy grupy metylowe w pozycjach C5, C7 i C8 pierścienia chromanolu, podczas gdy formy β- i γ- mają dwie, a formy δ- jedną grupę metylową, jak pokazano na rysunku 1.1.
Oprócz tokoferoli i tokotrienoli, w przyrodzie znaleziono również tocomonoenole i tocodienole zawierające odpowiednio jedno i dwa podwójne wiązania nienasycone. Na przykład, tocomonoenol z pojedynczym podwójnym wiązaniem przy węglu 11′, 2,5,7,8-tetrametylo1-2-(4′,8′,12′-trimetylotrideca-11′-enyl)-6-chromanol, został wyizolowany z oleju palmowego i oleju z otrębów ryżowych.15 Od tego czasu kilka grup wykryło tocomonoenole w roślinach i żywności roślinnej, takie jak α-tocomonoenol w oleju palmowym,16-22 oleju z pestek dyni (Cucurbita pepo L.),23 i oleju słonecznikowym (Helianthus annuus),24 γ-tokomonoenol w oleju z pestek dyni,22,23 δ-tokomonoenol w kiwi (Actinidia chinensis),25 oraz β-, γ-, i δ-tokomonoenol w liściach Kalanchoe daigremontiana i Phaseolus coccineus.26. Tocomonoenol z nienasyconym zakończeniem łańcucha izoprenoidowego został również znaleziony w tkankach łososia.27 Ponadto, tocodienole z dwoma podwójnymi wiązaniami przy węglu 7′ i 11′ zostały zidentyfikowane w oleju palmowym.16,21
Tokoferole zawierają trzy chiralne węgle, jeden przy C2 w pierścieniu chromanolu i dwa w łańcuchu bocznym przy C4′ i C8′. Naturalnie występujący α-tokoferol zawiera chiralne węgle w konformacji R, 2R, 4′R i 8′R-α-tokoferol. α-Tokotrienol ma jedno centrum chiralne przy C2 w pierścieniu chromanolu i naturalne tokotrienole występują jako izoforma R. Z drugiej strony, w wyniku chemicznej syntezy α-tokoferolu powstaje równomolowa mieszanina ośmiu różnych stereoizomerów: RRR, SRR, RSR, RRS, RSS, SSR, SRS i SSS. Syntetyczny α-tokoferol nazywany jest all-rac-α-tokoferolem. Równomolowa mieszanina RRR-α-tokoferolu i SRR-α-tokoferolu nazywana jest 2-ambo-α-tokoferolem. Nazwy IUPAC RRR-α-tokoferolu i RRR-α-tokotrienolu to odpowiednio (2R)-2,5,7,8-tetrametylo-2-chroman-6-ol i (2R)-2,5,7,8-tetrametylo-2–3,4-dihydrochromen-6-ol.
Przygotowano formy estrowe tokoferolu i tokotrienoli, w tym octan, nikotynian, bursztynian i fosforan, a także zbadano ich działanie i potencjalne zastosowania. Witamina E łatwo ulega utlenieniu pod wpływem ciepła, światła i w warunkach alkalicznych, ale estry są mniej podatne na utlenianie i dlatego są bardziej odpowiednie do zastosowań w żywności, kosmetykach i farmaceutyce niż jej wolna forma. Koniugaty glikolu polietylenowego z tokoferolami i tokotrienolami mają zdolność do tworzenia mieszalnych miceli w wodzie ze względu na właściwości amfifilowe i zwiększają biodostępność u zwierząt i ludzi poprzez poprawę ich rozpuszczalności w wodzie i absorpcji.28 Zgłoszono, że bursztynian RRR-α-tokoferylu glikolu polietylenowego 1000 działał jako bezpieczna i skuteczna forma witaminy E w celu odwrócenia lub zapobiegania niedoborowi witaminy E podczas przewlekłej cholestazy dziecięcej.29
1.3 Właściwości fizykochemiczne
Tokoferole są lepkimi olejami w temperaturze pokojowej, nierozpuszczalnymi w wodzie, ale rozpuszczalnymi w etanolu i rozpuszczalnikach aprotycznych. Witamina E jest lekko żółtym do bursztynowego, prawie bezwonnym, klarownym, lepkim olejem, który ciemnieje pod wpływem powietrza lub światła w wyniku utleniania. Właściwości fizykochemiczne α-tokoferolu, najbardziej obfitej i aktywnej formy witaminy E u ludzi, podsumowano w tabeli 1.1.30 Temperatura topnienia RRR-α-tokoferolu wynosi 3°C. Rotacje optyczne tokoferoli są bardzo małe i zależą od rodzaju rozpuszczalnika. Widma absorpcji w ultrafiolecie tokoferoli i tokotrienoli w etanolu wykazują maksimum absorpcji przy 292-298 nm, natomiast widma w podczerwieni wykazują rozciąganie OH (2,8 ± 3,0 µm) i CH (3,4 ± 3,5 µm) oraz charakterystyczne pasmo przy 8,6 µm. α-Tokoferol jest fluorescencyjny z maksimum emisji około 325 nm w roztworze hydrofobowym. Energia dysocjacji wiązania O-H α-tokoferolu wynosi 77,1 kcal mol-1.31 Wartości pKa dla α-, β-, γ- i δ-tokoferolu w roztworze micelarnym podano odpowiednio jako 13,1, 12,8, 12,7 i 12,6.32
Nazwa IUPAC | (2R)-2,5,7,8-Tetrametylo-2–3,4-dihydrochromen-6-ol | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Wzór cząsteczkowy | C29H50O2 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Masa cząsteczkowa | 430.7 g mol-1 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Opis fizyczny | Lekko żółty do bursztynowego, prawie bezwonny, klarowny, lepki olej | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Temperatura topnienia | 3 °C | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Temperatura wrzenia | 235 °C | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Rozpuszczalność | Nierozpuszczalny w wodzie (1.9 × 10-6 mg L-1 w 25 °C), rozpuszczalny w etanolu | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Gęstość | 0,950 g cm-3 w 25 °C | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Współczynnik podziału | log P = 12.2 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Stabilność | Niestabilny na światło UV, alkalia i utlenianie | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Stała dysocjacji | pKa = 10.8 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Maksimum absorpcji UV | 292 nm w etanolu | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Fluorescencja | Wzbudzenie 290-295 nm, emisja 320-335 nm | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
BDE (O-H)a | 77.1 kcal mol-1 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
a Energia dysocjacji wiązania.31 |
---|
Współczynnik podziału α-tokoferolu wynosi 12,2, natomiast kwasu askorbinowego -1,85,30 co wskazuje na ich odpowiednio lipofilowy i hydrofilowy charakter.
1.4 Źródła
Liczne pokarmy dostarczają witaminy E. Nasiona i owoce są jednym z najlepszych źródeł witaminy E. Zielone warzywa liściaste są również ważnym jej źródłem. Tylko rośliny i organizmy fotosyntetyzujące są w stanie syntetyzować witaminę E.33,34 Synteza jest ułatwiona przez enzymy do produkcji stereospecyficznych tokoferoli: RRR-tokoferoli.35 Tokoferole i tokotrienole mogą być ekstrahowane i oczyszczane lub koncentrowane z olejów roślinnych i innych materiałów roślin wyższych. Suplementy diety są kolejnym źródłem witaminy E. Większość suplementów witaminy E zawiera znacznie większe ilości witaminy E niż żywność. Witamina E w suplementach diety i żywności wzbogaconej jest często estryfikowana w celu przedłużenia okresu trwałości przy jednoczesnej ochronie jej właściwości przeciwutleniających.
Zawartość i skład tokoferoli i tokotrienoli w olejach naturalnych różni się znacznie w zależności od gatunku rośliny, a nawet w obrębie tego samego gatunku. Tokoferole są szeroko rozpowszechnione w roślinach wyższych, podczas gdy tokotrienole występują tylko w niektórych tkankach niefotosyntetyzujących. Przykładowe zawartości w naturalnych olejach jadalnych, zaczerpnięte z kilku doniesień36-41, przedstawiono w tabeli 1.2. α-tokoferol jest głównym tokoferolem w olejach palmowym, oliwkowym i słonecznikowym, natomiast zawartość γ-tokoferolu w niektórych olejach jadalnych, takich jak kukurydziany, rzepakowy i sojowy, jest wyższa niż α-tokoferolu.
Olej | αT | βT | γT | γT | δT | αT3 | βT3 | γT3 | δT3 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Kukurydza | 18-25 | 1 | 44-75 | 2-3 | 1 | 0 | 1-2 | <1 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Oliwka | 11-17 | <1 | 1 | <1 | <1 | <1 | <1 | <1 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Palm | 6-42 | <1 | <1 | <1 | <1 | 5-26 | <1 | 11-36 | 3-8 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Rapeseed | 18-24 | <1 | 37-51 | <1 | 0 | 0 | 0 | 0 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Otręby ryżowe | 1-15 | 0-2 | 0-8 | 0-2 | 0-13 | 0-2 | 1-23 | 0-2 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Soybean | 9-12 | 1 | 61-69 | 23-26 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Słonecznik | 32-59 | 0-2 | 1-4 | <1 | <1 | 0 | 0 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Zarodki pszenicy | 151-192 | 31-65 | 0-52 | <1 | 2-3 | 0-8 | 0-1 | <1 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
a W mg na 100 g oleju. Główne komponenty są zaznaczone pogrubioną czcionką. |
Głównymi źródłami tokotrienoli są palma, ryż i annato, stosunek tokoferolu do tokotrienolu w każdym z nich wynosi 25 : 75, 50 : 50 i 0,1 : 99,9, odpowiednio.42 Olej palmowy zawiera znaczne ilości α-, γ-, i δ-tokotrienoli. γ-tokotrienol jest główną izoformą witaminy E w oleju ekstrahowanym z otrębów ryżowych39,43 podczas gdy β-tokoferol jest jedną z głównych izoform występujących w oleju z kiełków pszenicy.36,37 Co ciekawe, frakcja lipidowa nasion annato (Bixa orellana L.) zawierała tylko tokotrienole, głównie δ-tokotrienol, ale nie zawierała tokoferoli.44
1.5 Synteza chemiczna
Ze względu na szerokie zastosowanie w przemyśle farmaceutycznym, spożywczym i kosmetycznym, na całym świecie produkuje się rocznie około 35 000 ton witaminy E.45 All-racemic-α-tocopherol, all-rac-α-tocopherol, równomolowa mieszanina wszystkich ośmiu stereoizomerów, jest przemysłowo najważniejszym produktem i jest przygotowywany w drodze całkowitej syntezy lub pochodzi ze źródeł naturalnych. Jest on stosowany głównie jako ester octanowy. Synteza przemysłowa składa się z trzech głównych części: przygotowania 2,3,5-trimetylohydrochinonu, produkcji składnika łańcucha bocznego i reakcji kondensacji.45
Czysty RRR-α-tokoferol jest chemicznie przygotowywany w drodze półsyntezy. Oleje roślinne rafinowane na dużą skalę i izolowane przez połączenie kilku metod separacji zawierają mieszaniny RRR-tokoferoli, które są przekształcane w RRR-α-tokoferol przez reakcje permetylacji. Wysiłki i strategie syntezy tokoferoli i tokotrienoli zostały szczegółowo opisane.45
1.6 Analiza
Produkty naturalne zawierają mieszaniny izomerycznych tokoferoli i tokotrienoli wraz z niewielkimi ilościami tocomonoenoli i tocodienoli. Są one metabolizowane i utleniane w celu wytworzenia wielu rodzajów związków. Próbki biologiczne zawierają skomplikowane mieszaniny izoform witaminy E oraz ich metabolitów i produktów utleniania. Identyfikacja i oznaczanie ilościowe izoform witaminy E i ich produktów są ważne dla wyjaśnienia ich roli i funkcji. Przygotowanie próbki jest najbardziej czasochłonnym i najważniejszym etapem analizy, ponieważ jest głównym źródłem błędów. Opisano wiele metod analitycznych, w tym kolorymetryczne, fluorometryczne, chromatografię gazową (GC), wysokosprawną chromatografię cieczową (HPLC),46 GC-MS,47 i HPLC-MS47,48 (patrz również Rozdział 2). Jeśli chodzi o dokumenty publiczne dotyczące metody ilościowego oznaczania witaminy E w aktywnych składnikach farmaceutycznych, Farmakopea Amerykańska i Europejska przyjmują metodę GC, natomiast Farmakopea Japońska metodę HPLC. Każda z tych metod ma swoje zalety i wady. Obecnie, metody HPLC są najczęściej stosowane.
Warunki HPLC dla analizy witaminy E zostały podsumowane w kilku przeglądach.46,47,49,50 Witamina E i jej produkty są uzyskiwane z produktów naturalnych, matryc żywnościowych i próbek biologicznych poprzez bezpośrednią ekstrakcję, ekstrakcję w fazie stałej i zmydlanie. Należy zachować ostrożność, aby uniknąć artefaktowego utleniania i rozkładu podczas przygotowywania próbek i analizy. Zastosowanie detekcji elektrochemicznej (amperometrycznej), fluorometrycznej (Ex. 290-295 nm, Em. 320-330 nm) lub MS jest znacznie bardziej czułe i specyficzne niż konwencjonalna detekcja UV. Tocol, 2-metylo-2-(4,8,12-trimetylotridecylo)-6-chromanol, może być najlepszym związkiem do wykorzystania jako wzorzec wewnętrzny, ponieważ jego właściwości są podobne do witaminy E. Znakowany deuterem octan α-tokoferolu jest powszechnie stosowany jako wzorzec w analizie MS. W większości analiz witaminy E, jonizacja chemiczna pod ciśnieniem atmosferycznym (APCI) jest używana w trybie jonizacji dodatniej. Można zauważyć, że nadkrytyczna chromatografia cieczowa wykorzystująca CO2 i etanol jako fazę ruchomą, NH2 jako fazę stacjonarną i spektrometrię mas do wykrywania i kwantyfikacji homologów witaminy E została zaproponowana jako „bardziej ekologiczna” strategia analityczna.51,52
1.7 Funkcje i zastosowania
Witamina E jest fizjologicznie niezbędnym mikroelementem i została zastosowana w różnych dziedzinach, w tym w medycynie, farmacji, kosmetyce i żywności. Przyjmuje się, że witamina E odgrywa ważną rolę w promocji zdrowia i zapobieganiu i/lub leczeniu niektórych chorób i zaburzeń. Dzienne zalecane spożycie wynosi 15 mg (22,4 IU, jednostka międzynarodowa) dla dorosłych.
Wykazano lub zaproponowano wiele funkcji witaminy E, w tym (1) przeciwutleniacz przez zmiatanie wolnych rodników, zwłaszcza rodników peroksylowych i tlenu singletowego, (2) stabilizacja błony przez tworzenie kompleksów z cząsteczkami destabilizującymi, tak aby zapobiec zakłóceniom równowagi amfipatycznej w strukturze, (3) fizjologiczny regulator aktywności enzymów, sygnalizacji komórkowej, proliferacji komórek i ekspresji genów, co nie jest bezpośrednio związane z działaniem antyoksydacyjnym, (4) hamowanie krzepnięcia płytek krwi, (5) zapobieganie chorobom, w tym zaburzeniom neurologicznym, chorobom układu krążenia, związanym z wiekiem uszkodzeniom oczu i skóry oraz bezpłodności, a także (6) biokompatybilny modyfikator biomateriałów i wyrobów medycznych, na przykład w polietylenie o wysokiej masie cząsteczkowej stosowanym w implantach stawu biodrowego i kolanowego. Argumentowano, że tokotrienole posiadają dodatkowe pozytywne efekty zdrowotne poza tymi z tokoferoli, w tym, na przykład, indukcja odpowiedzi immunologicznej i obniżenie poziomu cholesterolu w surowicy.53-55
Wśród tych funkcji, rola witaminy E jako przeciwutleniacza przeciwko peroksydacji lipidów spowodowanej przez wolne rodniki została jednoznacznie wykazana i wydaje się, że jest to najważniejsza fizjologiczna funkcja tej witaminy. Witamina E hamuje również utlenianie powietrza w żywności, olejach i materiałach przemysłowych, przedłużając ich żywotność. Fizjologiczne znaczenie innych funkcji, które nie są związane z funkcją antyoksydacyjną, musi zostać ustalone w przyszłych badaniach.
Witamina E jest szeroko stosowana jako suplement diety, sama lub wraz z innymi mikroelementami, takimi jak witamina C, w celu promowania zdrowia i zmniejszenia ryzyka lub zapobiegania chorobom, które, jak się zakłada, powstają w wyniku szkodliwej modyfikacji oksydacyjnej cząsteczek biologicznych. Witamina E jest stosowana do wzbogacania niektórych produktów spożywczych i napojów.
Niedobór witaminy E jest rzadki, ponieważ typowe diety wydają się zapewniać wystarczające ilości, chociaż niedożywienie i zaburzenia genetyczne mogą powodować niedobór witaminy E. Wcześniaki o bardzo niskiej masie urodzeniowej mogą mieć niedobór witaminy E. Ponadto osoby z zaburzeniami wchłaniania tłuszczu56 i dziedzicznymi zaburzeniami, w których wątrobowe białko transferowe α-tokoferolu (α-TTP) jest uszkodzone lub nieobecne57 lub występuje obniżony poziom selenoprotein58 są bardziej narażone na niedobór witaminy E i wymagają dużych dawek uzupełniającej witaminy E.
Zwrócono uwagę na potencjalną rolę witaminy E w zwalczaniu chorób przyzębia,59 niealkoholowego stłuszczeniowego zapalenia wątroby,60 i sarkopenii61. Niewystarczające spożycie mikroskładników odżywczych (witamin i fosforu) było istotnie związane z ciężkością choroby przyzębia.62 Przegląd systematyczny wykazał znaczącą poprawę parametrów przyzębia przez witaminę E i likopen.63 Witamina E może łagodzić związane z wiekiem zaburzenia funkcji szkieletu i zwiększać regenerację mięśni, zmniejszając w ten sposób sarkopenię.64
Słaba rozpuszczalność witaminy E w wodzie znacznie ograniczyła jej zastosowanie. Badania mające na celu poprawę zarówno doustnej, jak i miejscowej enkapsulacji i formulacji witaminy E były szeroko prowadzone, a różne systemy dostarczania witaminy E zostały opracowane w celu przezwyciężenia tego problemu i zwiększenia rozpuszczalności, przenikania i biodostępności. Liposomy,67 nanoemulsje i nanocząstki lipidowe68 to tylko niektóre przykłady.69 Ester tokoferylu glikolu polietylenowego i fosforan tokoferylu są rozpuszczalne w wodzie. Badano również polietylenowe koniugaty tokotrienoli.28
Dietetyczne polifenole, takie jak kwercetyna, są przekształcane do glukozydowych i/lub siarczanowych pochodnych lub ich O-metylowych pochodnych podczas wchłaniania do organizmu i występują jako te sprzężone metabolity w krwi krążącej. Nie opisano powstawania metabolitów tokoferolu, takich jak glukozyd, pochodne siarczanowe i O-metylowe in vivo, ale glukozyd α-tokoferolu został zsyntetyzowany z 2-hydroksymetylo-2,5,7,8-tetrametylochroman-6-olu i maltozy w wyniku transglikozylacji przy użyciu α-glukozydazy z Saccharomyces species.70 Glikozylowany produkt, 2-(α-d-glukopiranozylo)metylo-2,5,7,8-tetrametylochroman-6-ol, jest rozpuszczalny w wodzie i działa jako antyoksydant zmiatający rodniki.70,71 Otrzymano glukozyd δ-tokoferolu i badano jego działanie podczas stosowania miejscowego na skórę.72
Jednym z ważnych pytań jest to, czy każda izoforma witaminy E pełni swoją specyficzną funkcję, która nie jest wspólna z innymi izoformami. Argumentowano, że tokotrienol pełni pewne funkcje, których nie pełni tokoferol, oraz że tokoferol zakłóca takie funkcje tokotrienolu.42 Te ważne kwestie muszą zostać wyjaśnione w przyszłych badaniach.
1.8 Stabilność
Witamina E jest stabilna w temperaturze otoczenia, ale łatwo ulega utlenieniu w wysokiej temperaturze, pod wpływem światła lub w środowisku alkalicznym. Smażenie jest jedną z najbardziej powszechnych metod przygotowywania żywności i podczas procesu smażenia, zwykle w temperaturze 160-190 °C, witamina E utlenia się, dając skomplikowane mieszaniny produktów, w tym tokoferol (5,6-tokoferyldion) i dimery, które, jak się przypuszcza, powstają w wyniku rekombinacji rodników tokoferoksylowych. α-Tokoferol jest utleniany do rodnika α-tokoferoksylowego przez jony metali przejściowych, takich jak jony żelazowe (Fe3+) i jony miedziowe (Cu2+).
- H. M. Evans i K. S. Bishop, Science,1922, 56, 650 CrossRef CAS PubMed.
- E. Niki i M. G. Traber, Ann. Nutr. Metab.,2012, 61, 207 CrossRef CAS PubMed.
- H. M. Evans, O. H. Emerson i G. A. Emerson, J. Biol. Chem.,1936, 113, 319 Szukaj PubMed.
- E. Fernholz J. Am. Chem. Soc.,1938, 60, 700 CrossRef CAS.
- J. Bunyan, D. McHale, J. Green and S. Marcinkiewicz, Br. J. Nutr.,1961, 15, 253 CrossRef CAS.
- J. F. Pennock, F. W. Hemming i J. D. Kerr, Biochem. Biophys. Res. Commun.,1964, 30, 542 CrossRef.
- H. S. Olcott i O. H. Emerson, J. Am. Chem. Soc.,1937, 59, 1008 CrossRef CAS.
- L. Packer Am. J. Clin. Nutr.,1991, 53, 1050S CrossRef CAS.
- W. A. Pryor Free Radical Biol. Med.,2000, 28, 141 CrossRef CAS.
- M. G. Traber i J. Atkinson, Free Radical Biol. Med.,2007, 43, 4 CrossRef CAS.
- E. Niki Free Radical Biol. Med.,2014, 66, 3 CrossRef CAS.
- A. Azzi Free Radical Biol. Med.,2007, 43, 16 CrossRef CAS.
- R. Brigelius-Flohé i F. Galli, Mol. Nutr. Food Res.,2010, 54, 583 CrossRef.
- F. Galli, A. Azzi i M. Birringer, et al., Free Radical Biol. Med.,2017, 102, 16 CrossRef CAS.
- A. Matsumoto, S. Takahashi, K. Nakano and S. Kijima, J. Jpn. Oil Chem. Soc.,1995, 44, 593 CrossRef CAS.
- C. Mariani i G. Bellan, Riv. Ital. Sostanze Grasse,1996, 73, 533 CrossRef CAS.
- S. Strohschein, C. Rentel, T. Lacker, E. Bayer i K. Albert, Anal. Chem.,1999, 71, 1780 CrossRef CAS.
- M. H. Ng, Y. M. Choo, A. N. Ma, C. H. Chuah i M. A. Hashim, Lipids,2004, 39, 1031 CrossRef CAS.
- C. W. Puah, Y. M. Choo, A. N. Ma i C. H. Chuah, Am. J. Appl. Sci.,2007, 4, 374 CrossRef CAS.
- M. Mozzon, D. Pacetti, N. G. Frega and P. Lucci, J. Am. Oil Chem. Soc.,2015, 92, 717 CrossRef CAS.
- P. T. Gee, C. Y. Liew, M. C. Thong and M. C. Gay, Food Chem.,2016, 196, 367 CrossRef CAS.
- A. Irías-Mata, W. Stuetz and N. Sus, et al., J. Agric. Food Chem.,2017, 65, 7476 CrossRef.
- B. Butinar, M. Bučar-Miklavčič, C. Mariani and P. Raspor, Food Chem.,2011, 128, 505 CrossRef CAS.
- S. Hammann, M. Englert, M. Müller and W. Vetter, Anal. Bioanal. Chem.,2015, 407, 9019 CrossRef CAS.
- A. Fiorentino, C. Mastellone, B. D’Abrosca, S. Pacifico, M. Scognamiglio, G. Cefarelli, R. Caputo and P. Monaco, Food Chem.,2009, 115, 187 CrossRef CAS.
- J. Kruk, A. Pisarski and R. J. Szymańska, Plant Physiol.,2011, 168, 2021 CrossRef CAS.
- Y. Yamamoto, N. Maita, A. Fujisawa, J. Takashima, Y. Ishii and W. C. Dunlap, J. Nat. Prod.,1999, 62, 1685 CrossRef CAS.
- A. Abu-Fayyad, F. Behery and A. A. Sallam, et al., Eur. J. Pharm. Biopharm.,2015, 96, 185 CrossRef CAS.
- R. J. Sokol, N. Butler-Simon and C. Conner, et al., Gastroenterology,1993, 104, 1727 CrossRef CAS.
- Pub chem, https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/alpha-Tocopherol.
- M. Lucarini i G. F. Pedulli, Chem. Soc. Rev.,2010, 39, 2106 RSC.
- K. Mukai, A. Tokunaga, S. Itoh, Y. Kanesaki, A. Ouchi, K. Ohara, S. Nagaoka and K. Abe, Biofactors,2008, 32, 49 CrossRef CAS.
- S. Munné-Bosch Vitam. Horm.,2007, 76, 375 Szukaj PubMed.
- L. Mène-Saffrané Antioxidants,2017, 7, 2 CrossRef.
- D. DellaPenna J. Plant Physiol.,2005, 162, 729 CrossRef CAS.
- E. L. Syväoja, V. Pironen, P. Varo, P. Koivistoinen i K. Salminen, J. Am. Oil Chem. Soc.,1986, 63, 328 CrossRef.
- H. Schwartz, V. Ollilainen, V. Piironen and A. M. Lampi, J. Food Compos. Anal.,2008, 21, 152 CrossRef CAS.
- J. Frank, X. M. Chin, C. Schrader, G. P. Eckert and G. Rimbach, Ageing Res. Rev.,2012, 11, 163 CrossRef CAS.
- P. Goufo i H. Trindade, Food Sci. Nutr.,2014, 2, 75 CrossRef CAS.
- Y. F. Wong, A. Makahleh, B. Saad, M. N. Ibrahim, A. A. Rahim and N. Brosse, Talanta,2014, 130, 299 CrossRef.
- F. Shahidi and A. C. de Camargo, Int. J. Mol. Sci.,2016, 17, CrossRef CAS.pii: E1745
- A. M. Trias and B. Tan, Tocotrienols, B. Tan, R. R. Watson and V. R. Preedy, CRC Press, Boca Raton, 2013, ch. 5, p. 61 Search PubMed.
- P. Sookwong, K. Nakagawa, K. Murata and T. Miyazawa, J. Agric. Food Chem.,2007, 55, 461 CrossRef CAS.
- N. Frega, M. Mozzou i F. Bocci, J. Am. Oil Chem. Soc.,1998, 75, 1723 CrossRef CAS.
- T. Netscher Vitam. Horm.,2007, 76, 155 CrossRef CAS.
- K. Abe and A. Matsumoto, Vitamin E – Its Usefulness in Health and Curing Diseases, M. Mino, H. Nakamura, A. T. Diplock and H. Kayden, Japan Scientific Societies Press, Tokyo, 1993, pp. 13-19 Search PubMed.
- E. Bartosińska, M. Buszewska-Forajta i D. Siluk, J. Pharm. Biomed. Anal.,2016, 127, 156 CrossRef CAS.
- W. M. Stöggl, C. W. Huck, H. Scherz, M. Popp and G. K. Bonn, Chromatographia,2001, 54, 179 CrossRef.
- B. Cervinkova, L. K. Kremova, D. Solichova, B. Melichar and P. Solich, Anal. Bioanal. Chem.,2016, 408, 2407 CrossRef CAS.
- J. Y. Fu, T. T. Htar, L. De Silva, D. M. Tan and L. H. Chuah, Molecules,2017, 22, 233 CrossRef.
- T. Yarita, A. Nomura, K. Abe and Y. Takeshita, J. Chromatogr.,1994, 679, 329 CrossRef CAS.
- M. Mejean, A. Brunelle i D. Touboul, Anal. Bioanal. Chem.,2015, 407, 5133 CrossRef CAS.
- K. Nesaretnam, W. W. Yew and M. B. Wahid, Eur. J. Lipid Sci. Technol.,2007, 109, 445 CrossRef CAS.
- C. K. Sen, S. Khanna i S. Roy, Mol. Aspects Med.,2007, 28, 692 CrossRef CAS.
- Tocotrienols, B. Tan, R. R. Watson and V. R. Preedy, CRC Press, Boca Raton, 2013, Search PubMed.
- K. V. Kowdley, J. B. Mason, S. N. Meydani, S. Cornwall and R. J. Grand, Gastroenterology,1992, 102, 2139 CrossRef CAS.
- K. Ouahchi, M. Arita i H. Kayden, et al., Nat. Genet.,1995, 9, 141 CrossRef CAS PubMed.
- Y. Saito, M. Shichiri and T. Hamajima, et al., J. Lipid Res.,2015, 56, 2172 CrossRef CAS.
- G. Zong, A. E. Scott, H. R. Griffiths, P. L. Zock, T. Dietrich and R. S. Newson, J. Nutr.,2015, 145, 893 CrossRef CAS.
- A. J. Sanyal, N. Chalasani i K. V. Kowdley, et al., N. Engl. J. Med.,2010, 362, 1675 CrossRef CAS.
- E. Chung, H. Mo i S. Wang, et al., Nutr. Res.,2018, 49, 23 CrossRef CAS PubMed.
- P. P. Luo, H. S. Xu i S. P. Wu, Aust. Dent. J.,2018, 63, 193 CrossRef.
- F. W. Muniz, S. B. Nogueira, F. L. Mendes, C. K. Rösing, M. M. Moreira, G. M. de Andrade i R. S. Carvalho, Arch. Oral Biol.,2015, 60, 1203 CrossRef CAS.
- A. Ble, A. Cherubini i S. Volpato, et al., J. Gerontrol. A, Bio. Sci. Med. Sci.,2006, 61, 278 CrossRef.
- G. D’Arrigo, R. Baggetta, G. Tripepi, F. Galli and D. Bolignano, Blood Purif.,2017, 43, 101 CrossRef PubMed.
- A. Turner, Y. Okubo and S. Teramura, et al., J. Mech. Behav. Biomed. Mater.,2014, 31, 21 CrossRef CAS.
- S. Koudelka, P. Turanek-Knotigova and J. Masek, et al., J. Controlled Release,2015, 207, 59 CrossRef CAS.
- S. Hama i K. Kogure, Biol. Pharm. Bull.,2014, 37, 196 CrossRef CAS.
- V. Saez, I. D. L. Souza and C. R. E. Mansur, Int. J. Cosmet. Sci.,2018, 40, 103 -116 CrossRef CAS.
- H. Murase, R. Yamauchi, K. Kato, T. Kunieda and J. Terao, Lipids,1997, 32, 73 CrossRef CAS.
- H. Murase, J. H. Moon, R. Yamauchi, K. Kato, T. Kunieda, T. Yoshikawa and J. Terao, Free Radical Biol. Med.,1998, 24, 217 CrossRef CAS.
- A. Mavon, V. Raufast i D. Redoules, J. Controlled Release,2004, 100, 221 CrossRef CAS PubMed.
Dodaj komentarz