Skip to content

Archives

  • styczeń 2022
  • grudzień 2021
  • listopad 2021
  • październik 2021
  • wrzesień 2021

Categories

  • Brak kategorii
Trend RepositoryArticles and guides
Articles

CHAPTER 1

On 28 grudnia, 2021 by admin
EtsuoNiki and KouichiAbe, CHAPTER 1:Vitamin E: Structure, Properties and Functions , in Vitamin E: Chemistry and Nutritional Benefits, 2019, pp. 1-11 DOI: 10.1039/9781788016216-00001
eISBN: 978-1-78801-621-6

EtsuoNiki*a and KouichiAbeb
a University of Tokyo, Research Center for Advanced Science and Technology (RCAST), Komaba, Tokyo 153-8904, Japan. E-mail: [email protected]
b SSCI Laboratories, Faculty of Pharmacology, Musashino University, Nishi-Tokyo-Shi, Tokyo 202-0023, Japan.

Witamina E to zbiorcza nazwa lipofilnych, naturalnie występujących związków, których struktura molekularna składa się z pierścienia chromanolu z łańcuchem bocznym zlokalizowanym w pozycji C2 i obejmuje cztery tokoferole i cztery tokotrienole. Witamina E, odkryta jako czynnik żywieniowy niezbędny do prawidłowej reprodukcji, jest obecnie uznawana za główny antyoksydant zmiatający wolne rodniki u ludzi i chroniący cząsteczki biologiczne przed szkodliwymi modyfikacjami oksydacyjnymi. Podsumowano struktury i właściwości homologów witaminy E oraz ich źródła, funkcje i zastosowania.

  • 1.1 Wprowadzenie
  • 1.2 Homologi: Nomenklatura i Struktura
  • 1.3 Właściwości fizykochemiczne
  • 1.4 Źródła
  • 1.5 Synteza chemiczna
  • 1.6 Analiza
  • 1.7 Funkcje i zastosowania
  • 1.8 Stabilność

1.1 Wprowadzenie

W 1922 roku Evans i Bishop wykazali istnienie dotychczas nierozpoznanego czynnika żywieniowego niezbędnego do normalnej reprodukcji u szczura.1. Przyjęto w tym czasie, że najbardziej uderzające funkcji witaminy E było zapewnienie normalnej ciąży w ciąży szczura, aby zapobiec resorpcji zarodków, które niezmiennie występuje w jego braku.2 Ten nieznany czynnik diety X stwierdzono, że jest obecny w zielonej sałacie, suszone liście lucerny, pszenicy i owsa. Evans wyizolował czynnik X z oleju z kiełków pszenicy, podał wzór chemiczny C29H50O2 i zaproponował nazwę α-tokoferol w 1936.3 Wzór strukturalny dla α-tokoferolu został dostarczony przez Fernholz w 1938.4 Tocotrienols zostały odkryte znacznie później niż tokoferol i nazwane na początku 1960s.5,6

Olcott stwierdził, że frakcje lipidowe olejów roślinnych zawierały przeciwutleniacze przeciwko utleniającej degradacji smalcu.7. Od tego czasu jednoznacznie wykazano, że witamina E działa jako istotny przeciwutleniacz in vivo oraz in vitro i odgrywa ważną rolę w zapobieganiu szkodliwym uszkodzeniom oksydacyjnym cząsteczek biologicznych.8-11 Ostatnio wiele uwagi poświęcono również nieutleniającym funkcjom witaminy E, w tym sygnalizacji komórkowej, regulacji genów, procesom błonowym i funkcjom nerwowym.12-14 Jednak wiele kwestii pozostaje nadal kontrowersyjnych i nie zostało wyjaśnionych. Rzetelne informacje oparte na solidnych dowodach chemicznych są niezbędne do zrozumienia roli witaminy E in vivo, jak również in vitro.

1.2 Homologi: Nomenklatura i Struktura

Witamina E jest substancją pochodzenia roślinnego, rozpuszczalną w lipidach, której struktura molekularna składa się z pierścienia chromanolu z łańcuchem bocznym umieszczonym w pozycji C2. Witamina E odnosi się do grupy ośmiu różnych związków: α-, β-, γ-, i δ-tokoferoli i odpowiadających im czterech tokotrienoli. Cztery tokoferole mają nasycony fitylowy łańcuch boczny, podczas gdy tokotrienole mają nienasycony izoprenylowy łańcuch boczny zawierający trzy wiązania podwójne przy C3′, C7′ i C11′. Wiązania podwójne w łańcuchach bocznych tokotrienoli w C3′ i C7′ mają konfigurację trans. Formy α-, β-, γ- i δ- różnią się w odniesieniu do liczby i pozycji grup metylowych na pierścieniu chromanolu. Formy α tokoferolu i tokotrienolu mają trzy grupy metylowe w pozycjach C5, C7 i C8 pierścienia chromanolu, podczas gdy formy β- i γ- mają dwie, a formy δ- jedną grupę metylową, jak pokazano na rysunku 1.1.

Rys. 1.1 Struktura chemiczna homologów witaminy E.

Oprócz tokoferoli i tokotrienoli, w przyrodzie znaleziono również tocomonoenole i tocodienole zawierające odpowiednio jedno i dwa podwójne wiązania nienasycone. Na przykład, tocomonoenol z pojedynczym podwójnym wiązaniem przy węglu 11′, 2,5,7,8-tetrametylo1-2-(4′,8′,12′-trimetylotrideca-11′-enyl)-6-chromanol, został wyizolowany z oleju palmowego i oleju z otrębów ryżowych.15 Od tego czasu kilka grup wykryło tocomonoenole w roślinach i żywności roślinnej, takie jak α-tocomonoenol w oleju palmowym,16-22 oleju z pestek dyni (Cucurbita pepo L.),23 i oleju słonecznikowym (Helianthus annuus),24 γ-tokomonoenol w oleju z pestek dyni,22,23 δ-tokomonoenol w kiwi (Actinidia chinensis),25 oraz β-, γ-, i δ-tokomonoenol w liściach Kalanchoe daigremontiana i Phaseolus coccineus.26. Tocomonoenol z nienasyconym zakończeniem łańcucha izoprenoidowego został również znaleziony w tkankach łososia.27 Ponadto, tocodienole z dwoma podwójnymi wiązaniami przy węglu 7′ i 11′ zostały zidentyfikowane w oleju palmowym.16,21

Tokoferole zawierają trzy chiralne węgle, jeden przy C2 w pierścieniu chromanolu i dwa w łańcuchu bocznym przy C4′ i C8′. Naturalnie występujący α-tokoferol zawiera chiralne węgle w konformacji R, 2R, 4′R i 8′R-α-tokoferol. α-Tokotrienol ma jedno centrum chiralne przy C2 w pierścieniu chromanolu i naturalne tokotrienole występują jako izoforma R. Z drugiej strony, w wyniku chemicznej syntezy α-tokoferolu powstaje równomolowa mieszanina ośmiu różnych stereoizomerów: RRR, SRR, RSR, RRS, RSS, SSR, SRS i SSS. Syntetyczny α-tokoferol nazywany jest all-rac-α-tokoferolem. Równomolowa mieszanina RRR-α-tokoferolu i SRR-α-tokoferolu nazywana jest 2-ambo-α-tokoferolem. Nazwy IUPAC RRR-α-tokoferolu i RRR-α-tokotrienolu to odpowiednio (2R)-2,5,7,8-tetrametylo-2-chroman-6-ol i (2R)-2,5,7,8-tetrametylo-2–3,4-dihydrochromen-6-ol.

Przygotowano formy estrowe tokoferolu i tokotrienoli, w tym octan, nikotynian, bursztynian i fosforan, a także zbadano ich działanie i potencjalne zastosowania. Witamina E łatwo ulega utlenieniu pod wpływem ciepła, światła i w warunkach alkalicznych, ale estry są mniej podatne na utlenianie i dlatego są bardziej odpowiednie do zastosowań w żywności, kosmetykach i farmaceutyce niż jej wolna forma. Koniugaty glikolu polietylenowego z tokoferolami i tokotrienolami mają zdolność do tworzenia mieszalnych miceli w wodzie ze względu na właściwości amfifilowe i zwiększają biodostępność u zwierząt i ludzi poprzez poprawę ich rozpuszczalności w wodzie i absorpcji.28 Zgłoszono, że bursztynian RRR-α-tokoferylu glikolu polietylenowego 1000 działał jako bezpieczna i skuteczna forma witaminy E w celu odwrócenia lub zapobiegania niedoborowi witaminy E podczas przewlekłej cholestazy dziecięcej.29

1.3 Właściwości fizykochemiczne

Tokoferole są lepkimi olejami w temperaturze pokojowej, nierozpuszczalnymi w wodzie, ale rozpuszczalnymi w etanolu i rozpuszczalnikach aprotycznych. Witamina E jest lekko żółtym do bursztynowego, prawie bezwonnym, klarownym, lepkim olejem, który ciemnieje pod wpływem powietrza lub światła w wyniku utleniania. Właściwości fizykochemiczne α-tokoferolu, najbardziej obfitej i aktywnej formy witaminy E u ludzi, podsumowano w tabeli 1.1.30 Temperatura topnienia RRR-α-tokoferolu wynosi 3°C. Rotacje optyczne tokoferoli są bardzo małe i zależą od rodzaju rozpuszczalnika. Widma absorpcji w ultrafiolecie tokoferoli i tokotrienoli w etanolu wykazują maksimum absorpcji przy 292-298 nm, natomiast widma w podczerwieni wykazują rozciąganie OH (2,8 ± 3,0 µm) i CH (3,4 ± 3,5 µm) oraz charakterystyczne pasmo przy 8,6 µm. α-Tokoferol jest fluorescencyjny z maksimum emisji około 325 nm w roztworze hydrofobowym. Energia dysocjacji wiązania O-H α-tokoferolu wynosi 77,1 kcal mol-1.31 Wartości pKa dla α-, β-, γ- i δ-tokoferolu w roztworze micelarnym podano odpowiednio jako 13,1, 12,8, 12,7 i 12,6.32

Tabela 1.1Właściwości fizykochemiczne α-tokoferolu

Nazwa IUPAC (2R)-2,5,7,8-Tetrametylo-2–3,4-dihydrochromen-6-ol
Wzór cząsteczkowy C29H50O2
Masa cząsteczkowa 430.7 g mol-1
Opis fizyczny Lekko żółty do bursztynowego, prawie bezwonny, klarowny, lepki olej
Temperatura topnienia 3 °C
Temperatura wrzenia 235 °C
Rozpuszczalność Nierozpuszczalny w wodzie (1.9 × 10-6 mg L-1 w 25 °C), rozpuszczalny w etanolu
Gęstość 0,950 g cm-3 w 25 °C
Współczynnik podziału log P = 12.2
Stabilność Niestabilny na światło UV, alkalia i utlenianie
Stała dysocjacji pKa = 10.8
Maksimum absorpcji UV 292 nm w etanolu
Fluorescencja Wzbudzenie 290-295 nm, emisja 320-335 nm
BDE (O-H)a 77.1 kcal mol-1
a Energia dysocjacji wiązania.31

Współczynnik podziału α-tokoferolu wynosi 12,2, natomiast kwasu askorbinowego -1,85,30 co wskazuje na ich odpowiednio lipofilowy i hydrofilowy charakter.

1.4 Źródła

Liczne pokarmy dostarczają witaminy E. Nasiona i owoce są jednym z najlepszych źródeł witaminy E. Zielone warzywa liściaste są również ważnym jej źródłem. Tylko rośliny i organizmy fotosyntetyzujące są w stanie syntetyzować witaminę E.33,34 Synteza jest ułatwiona przez enzymy do produkcji stereospecyficznych tokoferoli: RRR-tokoferoli.35 Tokoferole i tokotrienole mogą być ekstrahowane i oczyszczane lub koncentrowane z olejów roślinnych i innych materiałów roślin wyższych. Suplementy diety są kolejnym źródłem witaminy E. Większość suplementów witaminy E zawiera znacznie większe ilości witaminy E niż żywność. Witamina E w suplementach diety i żywności wzbogaconej jest często estryfikowana w celu przedłużenia okresu trwałości przy jednoczesnej ochronie jej właściwości przeciwutleniających.

Zawartość i skład tokoferoli i tokotrienoli w olejach naturalnych różni się znacznie w zależności od gatunku rośliny, a nawet w obrębie tego samego gatunku. Tokoferole są szeroko rozpowszechnione w roślinach wyższych, podczas gdy tokotrienole występują tylko w niektórych tkankach niefotosyntetyzujących. Przykładowe zawartości w naturalnych olejach jadalnych, zaczerpnięte z kilku doniesień36-41, przedstawiono w tabeli 1.2. α-tokoferol jest głównym tokoferolem w olejach palmowym, oliwkowym i słonecznikowym, natomiast zawartość γ-tokoferolu w niektórych olejach jadalnych, takich jak kukurydziany, rzepakowy i sojowy, jest wyższa niż α-tokoferolu.

Tabela 1.2Zawartość tokoferoli (T) i tokotrienoli (T3) w reprezentatywnych olejach jadalnych. Zaadaptowano z ref. 36-41 a

.

.

.

.

.

Olej αT βT γT γT δT αT3 βT3 γT3 δT3
Kukurydza 18-25 1 44-75 2-3 1 0 1-2 <1
Oliwka 11-17 <1 1 <1 <1 <1 <1 <1
Palm 6-42 <1 <1 <1 <1 5-26 <1 11-36 3-8
Rapeseed 18-24 <1 37-51 <1 0 0 0 0
Otręby ryżowe 1-15 0-2 0-8 0-2 0-13 0-2 1-23 0-2
Soybean 9-12 1 61-69 23-26 0 0 0 0 0
Słonecznik 32-59 0-2 1-4 <1 <1 0 0
Zarodki pszenicy 151-192 31-65 0-52 <1 2-3 0-8 0-1 <1
a W mg na 100 g oleju. Główne komponenty są zaznaczone pogrubioną czcionką.

Głównymi źródłami tokotrienoli są palma, ryż i annato, stosunek tokoferolu do tokotrienolu w każdym z nich wynosi 25 : 75, 50 : 50 i 0,1 : 99,9, odpowiednio.42 Olej palmowy zawiera znaczne ilości α-, γ-, i δ-tokotrienoli. γ-tokotrienol jest główną izoformą witaminy E w oleju ekstrahowanym z otrębów ryżowych39,43 podczas gdy β-tokoferol jest jedną z głównych izoform występujących w oleju z kiełków pszenicy.36,37 Co ciekawe, frakcja lipidowa nasion annato (Bixa orellana L.) zawierała tylko tokotrienole, głównie δ-tokotrienol, ale nie zawierała tokoferoli.44

1.5 Synteza chemiczna

Ze względu na szerokie zastosowanie w przemyśle farmaceutycznym, spożywczym i kosmetycznym, na całym świecie produkuje się rocznie około 35 000 ton witaminy E.45 All-racemic-α-tocopherol, all-rac-α-tocopherol, równomolowa mieszanina wszystkich ośmiu stereoizomerów, jest przemysłowo najważniejszym produktem i jest przygotowywany w drodze całkowitej syntezy lub pochodzi ze źródeł naturalnych. Jest on stosowany głównie jako ester octanowy. Synteza przemysłowa składa się z trzech głównych części: przygotowania 2,3,5-trimetylohydrochinonu, produkcji składnika łańcucha bocznego i reakcji kondensacji.45

Czysty RRR-α-tokoferol jest chemicznie przygotowywany w drodze półsyntezy. Oleje roślinne rafinowane na dużą skalę i izolowane przez połączenie kilku metod separacji zawierają mieszaniny RRR-tokoferoli, które są przekształcane w RRR-α-tokoferol przez reakcje permetylacji. Wysiłki i strategie syntezy tokoferoli i tokotrienoli zostały szczegółowo opisane.45

1.6 Analiza

Produkty naturalne zawierają mieszaniny izomerycznych tokoferoli i tokotrienoli wraz z niewielkimi ilościami tocomonoenoli i tocodienoli. Są one metabolizowane i utleniane w celu wytworzenia wielu rodzajów związków. Próbki biologiczne zawierają skomplikowane mieszaniny izoform witaminy E oraz ich metabolitów i produktów utleniania. Identyfikacja i oznaczanie ilościowe izoform witaminy E i ich produktów są ważne dla wyjaśnienia ich roli i funkcji. Przygotowanie próbki jest najbardziej czasochłonnym i najważniejszym etapem analizy, ponieważ jest głównym źródłem błędów. Opisano wiele metod analitycznych, w tym kolorymetryczne, fluorometryczne, chromatografię gazową (GC), wysokosprawną chromatografię cieczową (HPLC),46 GC-MS,47 i HPLC-MS47,48 (patrz również Rozdział 2). Jeśli chodzi o dokumenty publiczne dotyczące metody ilościowego oznaczania witaminy E w aktywnych składnikach farmaceutycznych, Farmakopea Amerykańska i Europejska przyjmują metodę GC, natomiast Farmakopea Japońska metodę HPLC. Każda z tych metod ma swoje zalety i wady. Obecnie, metody HPLC są najczęściej stosowane.

Warunki HPLC dla analizy witaminy E zostały podsumowane w kilku przeglądach.46,47,49,50 Witamina E i jej produkty są uzyskiwane z produktów naturalnych, matryc żywnościowych i próbek biologicznych poprzez bezpośrednią ekstrakcję, ekstrakcję w fazie stałej i zmydlanie. Należy zachować ostrożność, aby uniknąć artefaktowego utleniania i rozkładu podczas przygotowywania próbek i analizy. Zastosowanie detekcji elektrochemicznej (amperometrycznej), fluorometrycznej (Ex. 290-295 nm, Em. 320-330 nm) lub MS jest znacznie bardziej czułe i specyficzne niż konwencjonalna detekcja UV. Tocol, 2-metylo-2-(4,8,12-trimetylotridecylo)-6-chromanol, może być najlepszym związkiem do wykorzystania jako wzorzec wewnętrzny, ponieważ jego właściwości są podobne do witaminy E. Znakowany deuterem octan α-tokoferolu jest powszechnie stosowany jako wzorzec w analizie MS. W większości analiz witaminy E, jonizacja chemiczna pod ciśnieniem atmosferycznym (APCI) jest używana w trybie jonizacji dodatniej. Można zauważyć, że nadkrytyczna chromatografia cieczowa wykorzystująca CO2 i etanol jako fazę ruchomą, NH2 jako fazę stacjonarną i spektrometrię mas do wykrywania i kwantyfikacji homologów witaminy E została zaproponowana jako „bardziej ekologiczna” strategia analityczna.51,52

1.7 Funkcje i zastosowania

Witamina E jest fizjologicznie niezbędnym mikroelementem i została zastosowana w różnych dziedzinach, w tym w medycynie, farmacji, kosmetyce i żywności. Przyjmuje się, że witamina E odgrywa ważną rolę w promocji zdrowia i zapobieganiu i/lub leczeniu niektórych chorób i zaburzeń. Dzienne zalecane spożycie wynosi 15 mg (22,4 IU, jednostka międzynarodowa) dla dorosłych.

Wykazano lub zaproponowano wiele funkcji witaminy E, w tym (1) przeciwutleniacz przez zmiatanie wolnych rodników, zwłaszcza rodników peroksylowych i tlenu singletowego, (2) stabilizacja błony przez tworzenie kompleksów z cząsteczkami destabilizującymi, tak aby zapobiec zakłóceniom równowagi amfipatycznej w strukturze, (3) fizjologiczny regulator aktywności enzymów, sygnalizacji komórkowej, proliferacji komórek i ekspresji genów, co nie jest bezpośrednio związane z działaniem antyoksydacyjnym, (4) hamowanie krzepnięcia płytek krwi, (5) zapobieganie chorobom, w tym zaburzeniom neurologicznym, chorobom układu krążenia, związanym z wiekiem uszkodzeniom oczu i skóry oraz bezpłodności, a także (6) biokompatybilny modyfikator biomateriałów i wyrobów medycznych, na przykład w polietylenie o wysokiej masie cząsteczkowej stosowanym w implantach stawu biodrowego i kolanowego. Argumentowano, że tokotrienole posiadają dodatkowe pozytywne efekty zdrowotne poza tymi z tokoferoli, w tym, na przykład, indukcja odpowiedzi immunologicznej i obniżenie poziomu cholesterolu w surowicy.53-55

Wśród tych funkcji, rola witaminy E jako przeciwutleniacza przeciwko peroksydacji lipidów spowodowanej przez wolne rodniki została jednoznacznie wykazana i wydaje się, że jest to najważniejsza fizjologiczna funkcja tej witaminy. Witamina E hamuje również utlenianie powietrza w żywności, olejach i materiałach przemysłowych, przedłużając ich żywotność. Fizjologiczne znaczenie innych funkcji, które nie są związane z funkcją antyoksydacyjną, musi zostać ustalone w przyszłych badaniach.

Witamina E jest szeroko stosowana jako suplement diety, sama lub wraz z innymi mikroelementami, takimi jak witamina C, w celu promowania zdrowia i zmniejszenia ryzyka lub zapobiegania chorobom, które, jak się zakłada, powstają w wyniku szkodliwej modyfikacji oksydacyjnej cząsteczek biologicznych. Witamina E jest stosowana do wzbogacania niektórych produktów spożywczych i napojów.

Niedobór witaminy E jest rzadki, ponieważ typowe diety wydają się zapewniać wystarczające ilości, chociaż niedożywienie i zaburzenia genetyczne mogą powodować niedobór witaminy E. Wcześniaki o bardzo niskiej masie urodzeniowej mogą mieć niedobór witaminy E. Ponadto osoby z zaburzeniami wchłaniania tłuszczu56 i dziedzicznymi zaburzeniami, w których wątrobowe białko transferowe α-tokoferolu (α-TTP) jest uszkodzone lub nieobecne57 lub występuje obniżony poziom selenoprotein58 są bardziej narażone na niedobór witaminy E i wymagają dużych dawek uzupełniającej witaminy E.

Zwrócono uwagę na potencjalną rolę witaminy E w zwalczaniu chorób przyzębia,59 niealkoholowego stłuszczeniowego zapalenia wątroby,60 i sarkopenii61. Niewystarczające spożycie mikroskładników odżywczych (witamin i fosforu) było istotnie związane z ciężkością choroby przyzębia.62 Przegląd systematyczny wykazał znaczącą poprawę parametrów przyzębia przez witaminę E i likopen.63 Witamina E może łagodzić związane z wiekiem zaburzenia funkcji szkieletu i zwiększać regenerację mięśni, zmniejszając w ten sposób sarkopenię.64

Słaba rozpuszczalność witaminy E w wodzie znacznie ograniczyła jej zastosowanie. Badania mające na celu poprawę zarówno doustnej, jak i miejscowej enkapsulacji i formulacji witaminy E były szeroko prowadzone, a różne systemy dostarczania witaminy E zostały opracowane w celu przezwyciężenia tego problemu i zwiększenia rozpuszczalności, przenikania i biodostępności. Liposomy,67 nanoemulsje i nanocząstki lipidowe68 to tylko niektóre przykłady.69 Ester tokoferylu glikolu polietylenowego i fosforan tokoferylu są rozpuszczalne w wodzie. Badano również polietylenowe koniugaty tokotrienoli.28

Dietetyczne polifenole, takie jak kwercetyna, są przekształcane do glukozydowych i/lub siarczanowych pochodnych lub ich O-metylowych pochodnych podczas wchłaniania do organizmu i występują jako te sprzężone metabolity w krwi krążącej. Nie opisano powstawania metabolitów tokoferolu, takich jak glukozyd, pochodne siarczanowe i O-metylowe in vivo, ale glukozyd α-tokoferolu został zsyntetyzowany z 2-hydroksymetylo-2,5,7,8-tetrametylochroman-6-olu i maltozy w wyniku transglikozylacji przy użyciu α-glukozydazy z Saccharomyces species.70 Glikozylowany produkt, 2-(α-d-glukopiranozylo)metylo-2,5,7,8-tetrametylochroman-6-ol, jest rozpuszczalny w wodzie i działa jako antyoksydant zmiatający rodniki.70,71 Otrzymano glukozyd δ-tokoferolu i badano jego działanie podczas stosowania miejscowego na skórę.72

Jednym z ważnych pytań jest to, czy każda izoforma witaminy E pełni swoją specyficzną funkcję, która nie jest wspólna z innymi izoformami. Argumentowano, że tokotrienol pełni pewne funkcje, których nie pełni tokoferol, oraz że tokoferol zakłóca takie funkcje tokotrienolu.42 Te ważne kwestie muszą zostać wyjaśnione w przyszłych badaniach.

1.8 Stabilność

Witamina E jest stabilna w temperaturze otoczenia, ale łatwo ulega utlenieniu w wysokiej temperaturze, pod wpływem światła lub w środowisku alkalicznym. Smażenie jest jedną z najbardziej powszechnych metod przygotowywania żywności i podczas procesu smażenia, zwykle w temperaturze 160-190 °C, witamina E utlenia się, dając skomplikowane mieszaniny produktów, w tym tokoferol (5,6-tokoferyldion) i dimery, które, jak się przypuszcza, powstają w wyniku rekombinacji rodników tokoferoksylowych. α-Tokoferol jest utleniany do rodnika α-tokoferoksylowego przez jony metali przejściowych, takich jak jony żelazowe (Fe3+) i jony miedziowe (Cu2+).

  1. H. M. Evans i K. S. Bishop, Science,1922, 56, 650 CrossRef CAS PubMed.
  2. E. Niki i M. G. Traber, Ann. Nutr. Metab.,2012, 61, 207 CrossRef CAS PubMed.
  3. H. M. Evans, O. H. Emerson i G. A. Emerson, J. Biol. Chem.,1936, 113, 319 Szukaj PubMed.
  4. E. Fernholz J. Am. Chem. Soc.,1938, 60, 700 CrossRef CAS.
  5. J. Bunyan, D. McHale, J. Green and S. Marcinkiewicz, Br. J. Nutr.,1961, 15, 253 CrossRef CAS.
  6. J. F. Pennock, F. W. Hemming i J. D. Kerr, Biochem. Biophys. Res. Commun.,1964, 30, 542 CrossRef.
  7. H. S. Olcott i O. H. Emerson, J. Am. Chem. Soc.,1937, 59, 1008 CrossRef CAS.
  8. L. Packer Am. J. Clin. Nutr.,1991, 53, 1050S CrossRef CAS.
  9. W. A. Pryor Free Radical Biol. Med.,2000, 28, 141 CrossRef CAS.
  10. M. G. Traber i J. Atkinson, Free Radical Biol. Med.,2007, 43, 4 CrossRef CAS.
  11. E. Niki Free Radical Biol. Med.,2014, 66, 3 CrossRef CAS.
  12. A. Azzi Free Radical Biol. Med.,2007, 43, 16 CrossRef CAS.
  13. R. Brigelius-Flohé i F. Galli, Mol. Nutr. Food Res.,2010, 54, 583 CrossRef.
  14. F. Galli, A. Azzi i M. Birringer, et al., Free Radical Biol. Med.,2017, 102, 16 CrossRef CAS.
  15. A. Matsumoto, S. Takahashi, K. Nakano and S. Kijima, J. Jpn. Oil Chem. Soc.,1995, 44, 593 CrossRef CAS.
  16. C. Mariani i G. Bellan, Riv. Ital. Sostanze Grasse,1996, 73, 533 CrossRef CAS.
  17. S. Strohschein, C. Rentel, T. Lacker, E. Bayer i K. Albert, Anal. Chem.,1999, 71, 1780 CrossRef CAS.
  18. M. H. Ng, Y. M. Choo, A. N. Ma, C. H. Chuah i M. A. Hashim, Lipids,2004, 39, 1031 CrossRef CAS.
  19. C. W. Puah, Y. M. Choo, A. N. Ma i C. H. Chuah, Am. J. Appl. Sci.,2007, 4, 374 CrossRef CAS.
  20. M. Mozzon, D. Pacetti, N. G. Frega and P. Lucci, J. Am. Oil Chem. Soc.,2015, 92, 717 CrossRef CAS.
  21. P. T. Gee, C. Y. Liew, M. C. Thong and M. C. Gay, Food Chem.,2016, 196, 367 CrossRef CAS.
  22. A. Irías-Mata, W. Stuetz and N. Sus, et al., J. Agric. Food Chem.,2017, 65, 7476 CrossRef.
  23. B. Butinar, M. Bučar-Miklavčič, C. Mariani and P. Raspor, Food Chem.,2011, 128, 505 CrossRef CAS.
  24. S. Hammann, M. Englert, M. Müller and W. Vetter, Anal. Bioanal. Chem.,2015, 407, 9019 CrossRef CAS.
  25. A. Fiorentino, C. Mastellone, B. D’Abrosca, S. Pacifico, M. Scognamiglio, G. Cefarelli, R. Caputo and P. Monaco, Food Chem.,2009, 115, 187 CrossRef CAS.
  26. J. Kruk, A. Pisarski and R. J. Szymańska, Plant Physiol.,2011, 168, 2021 CrossRef CAS.
  27. Y. Yamamoto, N. Maita, A. Fujisawa, J. Takashima, Y. Ishii and W. C. Dunlap, J. Nat. Prod.,1999, 62, 1685 CrossRef CAS.
  28. A. Abu-Fayyad, F. Behery and A. A. Sallam, et al., Eur. J. Pharm. Biopharm.,2015, 96, 185 CrossRef CAS.
  29. R. J. Sokol, N. Butler-Simon and C. Conner, et al., Gastroenterology,1993, 104, 1727 CrossRef CAS.
  30. Pub chem, https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/alpha-Tocopherol.
  31. M. Lucarini i G. F. Pedulli, Chem. Soc. Rev.,2010, 39, 2106 RSC.
  32. K. Mukai, A. Tokunaga, S. Itoh, Y. Kanesaki, A. Ouchi, K. Ohara, S. Nagaoka and K. Abe, Biofactors,2008, 32, 49 CrossRef CAS.
  33. S. Munné-Bosch Vitam. Horm.,2007, 76, 375 Szukaj PubMed.
  34. L. Mène-Saffrané Antioxidants,2017, 7, 2 CrossRef.
  35. D. DellaPenna J. Plant Physiol.,2005, 162, 729 CrossRef CAS.
  36. E. L. Syväoja, V. Pironen, P. Varo, P. Koivistoinen i K. Salminen, J. Am. Oil Chem. Soc.,1986, 63, 328 CrossRef.
  37. H. Schwartz, V. Ollilainen, V. Piironen and A. M. Lampi, J. Food Compos. Anal.,2008, 21, 152 CrossRef CAS.
  38. J. Frank, X. M. Chin, C. Schrader, G. P. Eckert and G. Rimbach, Ageing Res. Rev.,2012, 11, 163 CrossRef CAS.
  39. P. Goufo i H. Trindade, Food Sci. Nutr.,2014, 2, 75 CrossRef CAS.
  40. Y. F. Wong, A. Makahleh, B. Saad, M. N. Ibrahim, A. A. Rahim and N. Brosse, Talanta,2014, 130, 299 CrossRef.
  41. F. Shahidi and A. C. de Camargo, Int. J. Mol. Sci.,2016, 17, CrossRef CAS.pii: E1745
  42. A. M. Trias and B. Tan, Tocotrienols, B. Tan, R. R. Watson and V. R. Preedy, CRC Press, Boca Raton, 2013, ch. 5, p. 61 Search PubMed.
  43. P. Sookwong, K. Nakagawa, K. Murata and T. Miyazawa, J. Agric. Food Chem.,2007, 55, 461 CrossRef CAS.
  44. N. Frega, M. Mozzou i F. Bocci, J. Am. Oil Chem. Soc.,1998, 75, 1723 CrossRef CAS.
  45. T. Netscher Vitam. Horm.,2007, 76, 155 CrossRef CAS.
  46. K. Abe and A. Matsumoto, Vitamin E – Its Usefulness in Health and Curing Diseases, M. Mino, H. Nakamura, A. T. Diplock and H. Kayden, Japan Scientific Societies Press, Tokyo, 1993, pp. 13-19 Search PubMed.
  47. E. Bartosińska, M. Buszewska-Forajta i D. Siluk, J. Pharm. Biomed. Anal.,2016, 127, 156 CrossRef CAS.
  48. W. M. Stöggl, C. W. Huck, H. Scherz, M. Popp and G. K. Bonn, Chromatographia,2001, 54, 179 CrossRef.
  49. B. Cervinkova, L. K. Kremova, D. Solichova, B. Melichar and P. Solich, Anal. Bioanal. Chem.,2016, 408, 2407 CrossRef CAS.
  50. J. Y. Fu, T. T. Htar, L. De Silva, D. M. Tan and L. H. Chuah, Molecules,2017, 22, 233 CrossRef.
  51. T. Yarita, A. Nomura, K. Abe and Y. Takeshita, J. Chromatogr.,1994, 679, 329 CrossRef CAS.
  52. M. Mejean, A. Brunelle i D. Touboul, Anal. Bioanal. Chem.,2015, 407, 5133 CrossRef CAS.
  53. K. Nesaretnam, W. W. Yew and M. B. Wahid, Eur. J. Lipid Sci. Technol.,2007, 109, 445 CrossRef CAS.
  54. C. K. Sen, S. Khanna i S. Roy, Mol. Aspects Med.,2007, 28, 692 CrossRef CAS.
  55. Tocotrienols, B. Tan, R. R. Watson and V. R. Preedy, CRC Press, Boca Raton, 2013, Search PubMed.
  56. K. V. Kowdley, J. B. Mason, S. N. Meydani, S. Cornwall and R. J. Grand, Gastroenterology,1992, 102, 2139 CrossRef CAS.
  57. K. Ouahchi, M. Arita i H. Kayden, et al., Nat. Genet.,1995, 9, 141 CrossRef CAS PubMed.
  58. Y. Saito, M. Shichiri and T. Hamajima, et al., J. Lipid Res.,2015, 56, 2172 CrossRef CAS.
  59. G. Zong, A. E. Scott, H. R. Griffiths, P. L. Zock, T. Dietrich and R. S. Newson, J. Nutr.,2015, 145, 893 CrossRef CAS.
  60. A. J. Sanyal, N. Chalasani i K. V. Kowdley, et al., N. Engl. J. Med.,2010, 362, 1675 CrossRef CAS.
  61. E. Chung, H. Mo i S. Wang, et al., Nutr. Res.,2018, 49, 23 CrossRef CAS PubMed.
  62. P. P. Luo, H. S. Xu i S. P. Wu, Aust. Dent. J.,2018, 63, 193 CrossRef.
  63. F. W. Muniz, S. B. Nogueira, F. L. Mendes, C. K. Rösing, M. M. Moreira, G. M. de Andrade i R. S. Carvalho, Arch. Oral Biol.,2015, 60, 1203 CrossRef CAS.
  64. A. Ble, A. Cherubini i S. Volpato, et al., J. Gerontrol. A, Bio. Sci. Med. Sci.,2006, 61, 278 CrossRef.
  65. G. D’Arrigo, R. Baggetta, G. Tripepi, F. Galli and D. Bolignano, Blood Purif.,2017, 43, 101 CrossRef PubMed.
  66. A. Turner, Y. Okubo and S. Teramura, et al., J. Mech. Behav. Biomed. Mater.,2014, 31, 21 CrossRef CAS.
  67. S. Koudelka, P. Turanek-Knotigova and J. Masek, et al., J. Controlled Release,2015, 207, 59 CrossRef CAS.
  68. S. Hama i K. Kogure, Biol. Pharm. Bull.,2014, 37, 196 CrossRef CAS.
  69. V. Saez, I. D. L. Souza and C. R. E. Mansur, Int. J. Cosmet. Sci.,2018, 40, 103 -116 CrossRef CAS.
  70. H. Murase, R. Yamauchi, K. Kato, T. Kunieda and J. Terao, Lipids,1997, 32, 73 CrossRef CAS.
  71. H. Murase, J. H. Moon, R. Yamauchi, K. Kato, T. Kunieda, T. Yoshikawa and J. Terao, Free Radical Biol. Med.,1998, 24, 217 CrossRef CAS.
  72. A. Mavon, V. Raufast i D. Redoules, J. Controlled Release,2004, 100, 221 CrossRef CAS PubMed.

Dodaj komentarz Anuluj pisanie odpowiedzi

Twój adres e-mail nie zostanie opublikowany. Wymagane pola są oznaczone *

Archiwa

  • styczeń 2022
  • grudzień 2021
  • listopad 2021
  • październik 2021
  • wrzesień 2021

Meta

  • Zaloguj się
  • Kanał wpisów
  • Kanał komentarzy
  • WordPress.org
  • DeutschDeutsch
  • NederlandsNederlands
  • SvenskaSvenska
  • DanskDansk
  • EspañolEspañol
  • FrançaisFrançais
  • PortuguêsPortuguês
  • ItalianoItaliano
  • RomânăRomână
  • PolskiPolski
  • ČeštinaČeština
  • MagyarMagyar
  • SuomiSuomi
  • 日本語日本語

Copyright Trend Repository 2022 | Theme by ThemeinProgress | Proudly powered by WordPress