Riesenschwalbenschwanz – Papilio cresphontes Cramer

Gemeinsamer Name: Riesenschwalbenschwanz Wissenschaftlicher Name: Papilio cresphontes Cramer (Insecta: Lepidoptera: Papilionidae)

Der Riesenschwalbenschwanz, Papilio cresphontes Cramer, ist ein auffallender, wunderbar exotisch aussehender Schmetterling, der in Florida sehr häufig vorkommt. Der erwachsene Schmetterling ist ein gern gesehener Gast in Schmetterlingsgärten und in der allgemeinen Landschaftsbepflanzung. Das Larven- oder Raupenstadium kann als Schädling betrachtet werden, da es sich von den Blättern der meisten Zitrusarten ernährt. Einige wenige Orang-Utans, wie die Larven gemeinhin genannt werden, können kleine oder junge Pflanzen schnell entlauben. Auf großen Zitrusbäumen im Vorgarten können die Larven jedoch toleriert werden, um sich an dem sich bald entwickelnden prächtigen erwachsenen Schmetterlingsstadium zu erfreuen.

Abbildung 1. Adulter Riesenschwalbenschwanz, Papilio cresphontes Cramer, Dorsalansicht. Foto von Donald Hall, Abteilung für Entomologie und Nematologie, Universität von Florida.

Verbreitung (Zurück nach oben)

Der Riesenschwalbenschwanz ist auf dem gesamten amerikanischen Kontinent weit verbreitet. Sein Verbreitungsgebiet reicht vom südlichen Neuengland über die nördlichen Staaten der Großen Seen bis nach Ontario, durch die südlichen Teile der Central Plains bis zu den Rocky Mountains. Im Süden reicht das Verbreitungsgebiet bis nach Florida und in die Karibik, in den Südwesten der Vereinigten Staaten und weiter über Mexiko nach Mittel- und Südamerika. Der Riesenschwalbenschwanz ist im gesamten Bundesstaat Florida sehr verbreitet. In Südflorida ist er das ganze Jahr über aktiv, in Nordflorida ist er außer im Januar und Februar häufig.

Beschreibung (Zurück zum Anfang)

Ausgewachsen: Erwachsene Riesenschwalbenschwänze sind große Schmetterlinge mit einer Vorderflügelspannweite von 11,7 bis 17,5 cm (durchschnittlich 14 cm) bei den Männchen und einer Spannweite von 13,5 bis 18,8 cm (durchschnittlich 14,7 cm) bei den Weibchen. Die Rückenflächen des Schmetterlings sind schwarz mit einem auffälligen diagonalen gelben Balken auf den Vorderflügeln. Die ventralen Flügelflächen sind überwiegend gelb. Der Riesenschwalbenschwanz unterscheidet sich deutlich von allen anderen in Florida vorkommenden Schwalbenschwänzen, mit Ausnahme des vom Aussterben bedrohten Schaus’schen Schwalbenschwanzes (Papilio aristodemus ponceanus), der nur in den Florida Keys vorkommt. Der Riesenschwalbenschwanz lässt sich vom Schaus-Schwalbenschwanz durch die gelb gefüllten Schwänze (die Schwänze des Schaus-Schwalbenschwanzes sind alle schwarz) und den kleinen, ziegelroten Fleck direkt im Inneren des blauen Mittelstreifens auf dem ventralen Hinterflügel unterscheiden.

Abbildung 2. Adulter Riesenschwalbenschwanz, Papilio cresphontes Cramer, mit geschlossenen Flügeln. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Larve: Die fünf Larvenstadien unterscheiden sich im Aussehen, haben aber alle eine Ähnlichkeit mit Vogelkot. Jüngere Larven sind aufgrund ihrer geringeren Größe realistischere Nachahmer von Vogeldreck. Ausgewachsene Larven ruhen normalerweise auf Stängeln oder Blattstielen (Hagen 1999), aber jüngere Larven ruhen oft sichtbar auf den Oberseiten von Blättern, wo man Vogelkot erwarten würde.

Abbildung 3. Junge Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, (zur Veranschaulichung der Vogeldropping-Mimikry) auf einem Blatt von Ptelea trifoliata. Der Kopf ist nach oben gerichtet. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 4. Ausgewachsene Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Die jüngeren Larvenstadien sind überwiegend schwarz oder braun mit einem weißen Sattel, während die älteren Larvenstadien dunkelbraun gesprenkelt sind mit einem weißen oder cremefarbenen Hinterleib. Die jüngeren Instars haben auch Seten (Haare) auf markanten Noppen. In älteren Instanzen fehlen die Setae und die Noppen sind reduziert.

Abbildung 5. Frisch geschlüpfte Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, mit teilweise angefressener Eihülle. Der Kopf befindet sich auf der rechten Seite. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 6. Drei Tage alte Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 7. Fünf Tage alte Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Es wurde behauptet, dass die älteren Stadien kleinen Schlangen ähneln.

Abbildung 8. Reife Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, mit dem stark angeschwollenen Thorax, der einem Schlangenkopf ähnelt. Der Kopf der Larve befindet sich auf der rechten Seite. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 9. Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, in schlangenartiger „Schlag“-Pose. Der Kopf ist nach rechts gerichtet. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 10. Vorderansicht der Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, in schlangenartiger „Schlag“-Pose. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 11. Frontalansicht der Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, die das Osmeterium umgedreht zeigt und möglicherweise der gegabelten Zunge einer Schlange ähnelt. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Lebenszyklus (Zurück zum Anfang)

Ausgewachsene Schmetterlinge saugen Nektar von vielen Blumen und sind häufige, aber spektakuläre Besucher in Schmetterlingsgärten. Zu den bekannten Nektarquellen gehören Azalee, Bougainvillea, Japanisches Geißblatt, Goldrute, Frauenmantel, Hüpfende Bet und Sumpf-Milchkraut. Sie können auch Flüssigkeit aus Dung schlürfen. Erwachsene Männchen patrouillieren auf der Suche nach Weibchen durch Kiefernwälder oder Zitrushaine. Der Flug ist sehr kräftig und gemächlich, und die Falter können zwischen den Flügelschlägen lange Strecken gleiten. Balz und Kopulation finden am Nachmittag statt.

Abbildung 12. Ein Paarungspaar des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, mit dem Weibchen oben. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Die begatteten Weibchen legen ihre Eier gewöhnlich einzeln auf die Oberseite der Blätter von Wirtspflanzen. Die 1 bis 1,5 mm großen, kugelförmigen Eier sind cremefarben bis braun und haben typischerweise einen unregelmäßigen Überzug aus einem orangefarbenen Sekret, das an Orangenschalen erinnert. Die Larven durchlaufen fünf Stadien. Die Larven fressen in der Regel in der Nacht.

Abbildung 13. Dorsalansicht eines Eies des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, auf Herkuleskeule, Zanthoxylum clava-herculis L. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 14. Seitenansicht eines Eies des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, auf Herkulesstaude, Zanthoxylum clava-herculis L. Foto: Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Die Larven können sich auf kleinen Zweigen der Wirtspflanze verpuppen, von der sie sich ernährt haben, oder sie wandern eine kurze Strecke zu einer vertikal ausgerichteten Struktur, wie einem Zaun oder einer anderen Pflanze. Die bräunliche Puppe ist in der Regel in einem Winkel von 45° zum Verpuppungssubstrat ausgerichtet, wobei ihr hinteres Ende mit dem Klettverschluss-ähnlichen Cremaster direkt an einer seidenen Unterlage auf dem Substrat befestigt ist und ihr vorderes Ende über einen dünnen seidenen Faden mit dem Substrat verbunden ist. In Florida treten jedes Jahr mindestens zwei, wahrscheinlich sogar drei Generationen auf.

Abbildung 15. Präpupa des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 16. Lateralansicht einer Puppe des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 17. Dorsalansicht einer Puppe des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Wirtspflanzen (Zurück zum Anfang)

Abbildung 18. Herkulesstaude, Zanthoxylum clava-herculis L., ein Wirt des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 19. Kalkstachelblume, Zanthoxylum fagara Sarg., ein Wirt des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Abbildung 20. Meerestorchwood, Amyris elemifera L., ein Wirt des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Abteilung Entomologie und Nematologie, Universität von Florida.

Abbildung 21. Hoptree, Ptelea trifoliata L., in Blüte; ein Wirt für den Riesenschwalbenschwanz, Papilio cresphontes Cramer. Foto von Donald Hall, Abteilung Entomologie und Nematologie, Universität von Florida.

Abbildung 22. Hoptree, Ptelea trifoliata L., mit Früchten; ein Wirt des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer. Man beachte die typischen, waffelförmigen Früchte, von denen der Hopfenbaum einen seiner gebräuchlichen Namen, „Waffelesche“, ableitet. Foto von Donald Hall, Entomology and Nematology Department, University of Florida.

Management (Zurück zum Anfang)

Biologische Bekämpfung. Die Puppen des Riesenschwalbenschwanzes sind unbeweglich und wehrlos gegenüber parasitären Insekten. Die Puppen können von Lespesia rileyi (Williston), einer tachiniden Fliege, Brachymeria robusta (Cresson), einer chalkididen Wespe, und Pteromalus cassotis Walker und Pteromalus vanessae Howard, zwei pteromalidischen Wespen, parasitiert werden. Allerdings scheinen die Larvenstadien besser gegen natürliche Feinde geschützt zu sein als das Puppenstadium. Die Larven verteidigen sich gegen Fressfeinde (sowohl Insekten als auch Wirbeltiere) und parasitische Insekten, indem sie durch ihre kryptische Färbung und Musterung (z. B. durch Ähnlichkeit mit Vogelkot) weniger sichtbar sind. Außerdem besitzen die Larven ein Osmeterium, eine orangefarbene oder rötliche, Y-förmige, auswaschbare Drüse, die sich mittig hinter dem Kopf befindet. Wenn sie von kleinen Raubtieren angegriffen wird, stößt die Larve die Drüse aus und versucht, sie gegen den Angreifer zu wischen. Das Osmeterium des vierten und fünften Larvenstadiums enthält ein äußerst giftiges, stechendes Gemisch von Chemikalien (eine 40:60-Mischung aus Isobuttersäure und 2-Methylbuttersäure), das wie ranzige Butter riecht. Dieses Drüsensekret ist abstoßend und giftig für kleine Raubtiere wie Ameisen und Spinnen. Studien haben gezeigt, dass Vögel von diesen Sekreten nicht abgestoßen werden, aber dennoch nur selten die Larven des Riesenschwalbenschwanzes fressen. Es wird vermutet, dass die Larven auch innere Gifte (aus ihren Nahrungspflanzen) enthalten können.

Abbildung 23. Reife Larve des Riesenschwalbenschwanzes, Papilio cresphontes Cramer, mit umgedrehtem Osmeterium. Der Kopf befindet sich auf der linken Seite. Foto von Donald Hall, Abteilung für Entomologie und Nematologie, Universität von Florida.

Mechanische Bekämpfung. Hausbesitzer können feststellen, dass schon wenige Larven des Riesenschwalbenschwanzes kleine, getopfte oder gepflanzte Zitruspflanzen entlauben können. Die Larven sollten von Hand aus diesen kleinen Pflanzen herausgepickt werden, damit der Blüten- und Fruchtertrag nicht drastisch reduziert wird. Ausgewachsene Bäume im Garten sind groß genug, um eine gewisse Entlaubung zu verkraften.

Chemische Bekämpfung. Reife kommerzielle Zitrusbäume können einem Befall durch viele Larven standhalten. Baumschulbestände und junge Bäume in Hainen können jedoch bei Bedarf mit Bacillus thuringiensis und synthetischen Insektiziden geschützt werden, wie im Florida Citrus Pest Management Guide für beißend-kauende Insekten beschrieben (siehe „orangedog“) .

Ausgewählte Referenzen (Zurück zum Anfang)

• Cech R, Tudor G. 2005. Butterflies of the East Coast: An Observer’s Guide. Princeton University Press. Princeton, New Jersey. 345 pp.
• Crocker RL, Simpson BJ. 1979. Mexican orange, Choisya dumosa (Rutaceae), a potential ornamental is host for orangedog, Papilio cresphontes (Lepidoptera: Papilionidae). Southwest Entomologist 4: 11-13.

• Daniels JC. 2003. Butterflies of Florida: Field Guide. Adventure Publications, Inc. Cambridge, Minnesota. 256 pp.
• Eisner T, Pliske TE, Ikeda M, Owen DF, Vazquez L, Perez H, Franclemont JG, Meinwald J. 1970. Defense mechanisms of arthropods. XXVII. Osmeterielle Sekrete von Papilionidenraupen (Baronia, Papilio, Eurytides). Annals of the Entomological Society of America 63: 914-915.
• Gerberg EJ, Arnett Jr. RH. 1989. Florida Butterflies. Natural Science Publications, Inc. Baltimore, Maryland.
• Glassberg J, Minno MC, Calhoun JV. 2000. Butterflies through Binoculars: Florida. Oxford University Press. New York, New York. 256 pp.
• Hagen RH. 1999. Prolegs of Papilionini (Lepidoptera: Papilionidae): alternative solutions to the problem of attachment. pp. 237-251. In Byers GW, Hagen RH, Brooks RW. Entomologische Beiträge in Erinnerung an Byron A. Alexander. Natural History Museum, University of Kansas, Lawrence, Kansas, USA.
• Kimball CP. 1965. Arthropods of Florida and Neighboring Land Areas. Vol. 1. Division of Plant Industry, Florida Department of Agriculture, Gainesville, Florida. 363 pp.
• Leslie AJ, Berenbaum MR. 1990. Role of the osmeterial gland in swallowtail larvae (Papilionidae) in defence against an avian predator. Journal of the Lepidoptera Society 44: 245-251.
• Minno MC, Butler JF, Hall DW. 2005. Florida Butterfly Caterpillars and their Host Plants. University Press of Florida. Gainesville, Florida. 341 pp.
• Minno MC und Emmel TC. 1993. Butterflies of the Florida Keys. Scientific Publishers. Gainesville, Florida. 168 pp.
• Minno MC und Minno M. 1999. Florida Butterfly Gardening: A Complete Guide to Attracting, Identifying, and Enjoying Butterflies of the Lower South. University Press of Florida. Gainesville, Florida. 210 pp.
• Opler PA, Krizek GO. 1984. Butterflies East of the Great Plains. An Illustrated Natural History. The Johns Hopkins University Press, Baltimore, Maryland. 294 pp.
• Scriber MC, Tsubaki Y, Lederhouse RC. 1995. Swallowtail Butterflies: Their Ecology & Evolutionary Biology. Scientific Publishers. Gainesville, Florida. 459 pp.
• USDA. (2009). Plant Database. USDA National Resources Conservation Service. http://plants.usda.gov/ (8. April 2009).
• Wunderlin RP und Hansen BF. 2003. Guide to the Vascular Plants of Florida. 2nd ed. University Press of Florida. Gainesville, Florida. 787 pp.
• Wunderlin RP, Hansen BF. (2008). Atlas of Florida Vascular Plants. Institute for Systematic Botany. http://www.plantatlas.usf.edu/ (8 April 2009).